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    <ArticleType>Meeting Abstract</ArticleType>
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      <Title language="de">In-vitro-Validierung eines optischen Detektionssystems f&#252;r einen smarten Knie-Spacer zur quantitativen Infektionserkennung im zweizeitigen Prothesenwechsel</Title>
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      <DatePublished>20251031</DatePublished>
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      <AltText language="en">This is an Open Access article distributed under the terms of the Creative Commons Attribution 4.0 License.</AltText>
      <AltText language="de">Dieser Artikel ist ein Open-Access-Artikel und steht unter den Lizenzbedingungen der Creative Commons Attribution 4.0 License (Namensnennung).</AltText>
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        <MeetingCorporation>Deutsche Gesellschaft f&#252;r Orthop&#228;die und Unfallchirurgie</MeetingCorporation>
        <MeetingCorporation>Deutsche Gesellschaft f&#252;r Orthop&#228;die und Orthop&#228;dische Chirurgie</MeetingCorporation>
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        <MeetingTitle>Deutscher Kongress f&#252;r Orthop&#228;die und Unfallchirurgie (DKOU 2025)</MeetingTitle>
        <MeetingSession>Abstracts &#124; Gelenkersatz &#8211; perioperativ</MeetingSession>
        <MeetingCity>Berlin</MeetingCity>
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          <DateFrom>20251028</DateFrom>
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    <ArticleNo>AB73-2935</ArticleNo>
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      <MainHeadline>Text</MainHeadline><Pgraph><Mark1>Zielsetzung und Fragestellung: </Mark1>Periprothetische Gelenkinfektionen sind eine h&#228;ufige Ursache f&#252;r Revisionseingriffe nach Knieendoprothesen. Der zweizeitige Prothesenwechsel mit antibiotikahaltigen Spacern ist der Goldstandard. Diese Studie untersucht einen innovativen SmartSpacer mit optischen Sensoren zur Echtzeiterfassung des Infektionsstatus. Ziel ist es, den optimalen Zeitpunkt f&#252;r die Reimplantation bei zweizeitiger Revision zu bestimmen, da bisher keine standardisierte Methode zur Bewertung der Infektionsfreiheit existiert.</Pgraph><Pgraph><Mark1>Material und Methoden: </Mark1>Etablierung einer realit&#228;tsnahen <Mark2>in-vitro</Mark2>-Testumgebung eines infizierten Kniegelenks mit Synovialmembran in Modell-Fl&#252;ssigkeit (Abbildung 1 <ImgLink imgNo="1" imgType="figure" />). Dabei wurden Parameter wie K&#246;rpertemperatur, zeitabh&#228;ngige Gentamicin-Konzentrationen, sowie verschiedene Erreger-Konzentrationen (S. epidermidis, ATCC<Superscript>&#174;</Superscript> 25923TM) mit einbezogen, um sowohl high-grade als auch low-grade Infektionen zu simulieren.</Pgraph><Pgraph><Mark1>Ergebnisse: </Mark1>Das entwickelte <Mark2>In-vitro-</Mark2>Modell erwies sich als effektiv und zuverl&#228;ssig. Die Synovialmembran mit anliegender Bindegewebsmatrix zeigte die erwartete Absorption des LED-Lichts und fungierte als selektive Barriere f&#252;r die Bakteriensuspension. Ein besonderer Fokus lag auf der Verwendung verschiedener Membranproben, die sich in ihrer Oberfl&#228;chenbeschaffenheit und Dicke unterschieden. Diese Variabilit&#228;t f&#252;hrte zu unterschiedlichen Graden der Lichtabsorption und Abdunklung, was die Komplexit&#228;t und Heterogenit&#228;t realer Synovialmembranen widerspiegelt. Trotz dieser herausfordernden Bedingungen konnten die optischen Sensoren erfolgreich spektrale Fingerabdr&#252;cke f&#252;r verschiedene Bakterienkonzentrationen (106, 104 und 102 KBE&#47;ml) erfassen. Die Verwendung von PBS mit physiologischer Albuminkonzentration als Synovialfl&#252;ssigkeits-Ersatz trug zur Verbesserung der Modellgenauigkeit bei.</Pgraph><Pgraph>Die pr&#228;limin&#228;re Datenanalyse, die sich auf den spektralen Bereich zwischen 510 nm und 610 nm konzentrierte, lieferte vielversprechende Ergebnisse. Die Charakterisierung der spektralen Fingerabdr&#252;cke hinsichtlich Amplitude, Standardabweichung und Fl&#228;che unter der Kurve (AUC) erm&#246;glichte eine differenzierte Beurteilung der Bakterienkonzentrationen.</Pgraph><Pgraph><Mark1>Diskussion und Schlussfolgerung: </Mark1>Diese ersten Ergebnisse unterstreichen die Validit&#228;t und Flexibilit&#228;t des <Mark2>In-vitro</Mark2>-Modells als Plattform f&#252;r die weitere Erforschung der Bakteriendetektion in gelenk&#228;hnlichen Umgebungen. Die F&#228;higkeit des Systems, trotz variierender Membrancharakteristika zuverl&#228;ssige Daten zu liefern, deutet auf ein hohes Potenzial zur Optimierung und klinischen Anwendung des SmartSpacer-Systems hin. Bei erfolgreicher Validierung folgt eine Tierstudie zur Bewertung von Leistungsf&#228;higkeit und Sicherheit unter physiologischen Bedingungen. </Pgraph><Pgraph>Abbildung 2 <ImgLink imgNo="2" imgType="figure" /></Pgraph></TextBlock>
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          <Caption><Pgraph><Mark1>Abbildung 1:</Mark1><Mark1><Mark2> In-vitro</Mark2></Mark1><Mark1> Testaufbau zur Evaluierung des SmartSpacers.</Mark1></Pgraph></Caption>
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          <Caption><Pgraph><Mark1>Abbildung 2: Schematische Darstellung des </Mark1><Mark1><Mark2>In-vitro</Mark2></Mark1><Mark1>-Versuchsablaufs zur Evaluation des SmartSpacer-Systems. a) Herstellung des Synovialfl&#252;ssigkeits-Analogons mit definierten Bakterienkonzentrationen (10&#178;-106 KBE&#47;ml). Fixierung der Synovialmembran vor der optischen Detektionseinheit. b) Datenanalyse mittels entwickeltem Algorithmus zur Auswertung der spektralen Fingerabdr&#252;cke. c) Nach Validierung der </Mark1><Mark1><Mark2>In-vitro-</Mark2></Mark1><Mark1>Ergebnisse: &#220;bergang zu </Mark1><Mark1><Mark2>In-vivo</Mark2></Mark1><Mark1>-Studien. </Mark1></Pgraph></Caption>
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